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AP-C100手持式叶绿素荧光测量仪(试管式)

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产品名称: AP-C100手持式叶绿素荧光测量仪(试管式)
产品型号: AP-C100
产品展商: 捷克PSI
产品价格: 0.00 元

简单介绍
AP-C100手持式叶绿素荧光测量仪(试管式),AP-C100手持式叶绿素荧光测量仪(试管式)采用调试式荧光测量技术,可设置多种参数,方便测量多种植物叶绿素荧光。外观小巧,方便携带,设计新颖,操作简单,经济耐用,精度高稳定性好。

AP-C100手持式叶绿素荧光测量仪(试管式)的详细介绍

AP-C100手持式叶绿素荧光测量仪(试管式)
AP-C100手持式叶绿素荧光测量仪(试管式)采用调试式荧光测量技术,可设置多种参数,方便测量多种植物叶绿素荧光。外观小巧,方便携带,设计新颖,操作简单,经济耐用,精度高稳定性好。
 
应用领域
适用于光合作用研究和教学,植物及分子生物学研究,农业、林业,生物技术领域等。研究内容涉及光合活性、胁迫响AP-C100手持式叶绿素荧光测量仪(试管式)应、农药药效测试、突变等。

  • 植物光合特性和代谢紊乱筛选                     
  • 生物和非生物胁迫的检测
  • 植物抗胁迫能力或者易感性研究
  • 代谢混乱研究
  • 长势与产量评估
  • 植物——微生物交互作用研究
  • 植物——原生动物交互作用研究
 
AP-C100手持式叶绿素荧光测量仪(试管式)典型样品
  • 地表结皮
  • 地衣、苔藓
  • 表层水体藻类
  • 其它
 
AP-C100手持式叶绿素荧光测量仪(试管式)工作原理
利用调制式荧光测量技术,采用LED光源,选择仪器内置的给光方案测量并计算叶绿素荧光的各种参数。
 
功能特点:实验过程和测量参数
  • 测量光密度OD680OD720

  • Ft:瞬时叶绿素荧光、暗适应完成后Ft=Fo
  • QY:光量子效率,表示光系统II 的效率,等于Fv/Fm(暗适应完成的样品)或Fv’/Fm’ (光适应完成的样品)
  • OJIP:叶绿素荧光瞬时OJIP曲线是反应光合作用过程中植物生理时间过程的重要信号。
  • NPQ:非光化学淬灭,表示光合作用中叶绿素吸收光能后以热形式散失掉的部分。
  • 光曲线:Qy对不同光强的适应曲线。
  • PAR测量:可在荧光仪上显示PAR值,可计算20次检测值的平均。
  • 另外还具有GPS定位功能
 
技术参数AP-C100手持式叶绿素荧光测量仪(试管式)
  • 测量参数:Fo, Ft, Fm, Fm´,QY, OJIP, NPQ 1,2 和光曲线1,2,3。
  • 测量光:蓝光(可选红光或白光)                        
  • 光化学光和饱和光:0–3000µmol.m-2.s-1可调
  • 波长检测范围:697nm-750nm
  • BOIS:可升级
  • 通讯:可选蓝牙、USB或串行接口
  • 存储:4M
  • 数据存储:100,000个
  • 显示:2 x 8字符黑白液晶屏
  • 键盘:密封防水设计2键
  • 自动关机:5分钟无操作
  • 电源:4 AAA碱性电池或充电电池
  • 电池寿命:持续测量70 h
  • 低电报警
  • 尺寸:120 x 57 x 30 mm; 4.7" x 2.2" x 1.2"
  • 重量:180 g, 6.5 oz
  • 操作条件:温度:0 ~ 55 ºC;相对湿度:0 ~ 95 %非冷凝
  • 存储条件:温度:-10 to +60 ºC;相对湿度:0 ~ 95 %非冷凝
  • 软件:FluorPen2.0, Windows 2000,XP或更高*,实时显示和遥控,植入GPS绘图,EXCEL输出
  • PAR传感器:读数单位µmol(photons)/m².s,可显示读数,检测范围400-700 nm
 
操作软件与实验结果
AP-C100手持式叶绿素荧光测量仪(试管式)
 
配置型号指南:
·标准配置——AP-C100 + GPS模块 + PAR传感器:功能完备
·简化配置——AP-C100:无PAR数据+ 无GPS数据
 
产地: 欧洲
 
参考文献

Harding S.A., Jarvie M.M., Lindroth R.L. and Tsai Ch-J. (2009): A comparative analysis of phenylpropanoid metabolism, N utilization, and carbon partitioning in fast- and slow-growing Populus hybrid clones. J. Exp. Botany, Vol. 60 (12), pp. 3443-3452.
Klem K. and Bajerova E. (2008): Adjustment of herbicide dose in sugar beet based on non-invasive chlorophyll fluorescence measurements. AgEng 2008 Conference, Hersonissos, Crete.
 
附:参数列表
Bckg = background
Fo: = F50µs; fluorescence intensity at 50 µs
Fj: = fluorescence intensity at j-step (at 2 ms)
Fi: = fluorescence intensity at i-step (at 60 ms)
Fm: = maximal fluorescence intensity
Fv: = Fm - Fo (maximal variable fluorescence)
Vj = (Fj - Fo) / (Fm - Fo)
Fm / Fo = Fm / Fo
Fv / Fo = Fv / Fo
Fv / Fm = Fv / Fm
Mo = TRo / RC - ETo / RC
Area = area between fluorescence curve and Fm
Sm = area / Fm - Fo (multiple turn-over)
Ss = the smallest Sm turn-over (single turn-over)
N = Sm . Mo . (I / Vj) turn-over number QA
Phi_Po = (I - Fo) / Fm (or Fv / Fm)
Phi_o = I - Vj
Phi_Eo = (I - Fo / Fm) . Phi_o
Phi_Do = 1 - Phi_Po - (Fo / Fm)
Phi_Pav = Phi_Po - (Sm / tFM); tFM = time to reach Fm (in ms)
ABS / RC = Mo . (I / Vj) . (I / Phi_Po)
TRo / RC = Mo . (I / Vj)
ETo / RC = Mo . (I / Vj) . Phi_o)
DIo / RC = (ABS / RC) - (TRo / RC)
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