C7B8H4 小鼠杂交瘤细胞
杂交瘤细胞的命名通常包含 实验室编号、融合批次、克隆孔位 等信息。以 “C7B8H4” 为例:
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前缀 C7B8:可能代表某实验室第 7 批融合实验中编号为 B8 的培养板或样本。
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后缀 H4:“H” 对应 96 孔板的第 8 列(A-H 列),“4” 为行号,即该细胞是从 H4 孔筛选出的单细胞克隆。
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关联性:与 C7B8 系列其他克隆(如 A8、F10、H4)可能源自 同一融合事件,共享相同的免疫原(如特定抗原免疫的小鼠脾细胞与骨髓瘤细胞融合),但因克隆差异导致 分泌抗体的表位或亲和力不同。
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来源:由免疫小鼠的脾 B 细胞与骨髓瘤细胞(如 SP2/0、NS0)融合后,经 HAT 筛选获得的克隆化细胞。
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生长特性:
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悬浮或半贴壁生长,倍增时间约 18–24 小时。
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依赖含动物血清的培养基(如 10% FBS+RPMI 1640),部分细胞需添加 丙酮酸钠 或 非必需氨基酸 促进生长。
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核心功能:稳定分泌单克隆抗体,抗体类型(IgG、IgM 等)和特异性由免疫原决定。
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培养基配方:
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基础培养基:RPMI 1640 或 DMEM,添加 10% FBS、1% 双抗(青霉素 / 链霉素),pH 调至 7.2–7.4。
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无血清驯化:若需工业化生产,可逐步过渡至无血清培养基(如 Ex-Cell 302),需注意细胞适应期(约 2–3 周)。
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传代与冻存:
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传代密度:建议在细胞密度达 5×10⁵–1×10⁶ cells/mL 时传代,避免密度过低导致凋亡。
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冻存条件:90% FBS+10% DMSO,程序降温(-80℃过夜后转液氮),冻存管需标注 细胞名称、代次、冻存日期。
C7B8H4 的具体应用取决于其分泌抗体的靶点,以下为通用性研究方向:
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抗原鉴定:
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通过 免疫沉淀(IP)- 质谱(MS) 或 ELISA 交叉反应实验 确定抗体识别的抗原(如肿瘤标志物、病毒蛋白、细胞因子等)。
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若靶向细胞表面分子(如 CD 抗原),可用于 流式细胞术分选 或 细胞亚型鉴定。
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表位分析:与同系列其他克隆(如 H4 vs. F10)对比,通过 竞争结合实验 或 抗原突变体筛选,明确抗体识别的线性或构象表位。
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体外诊断试剂:
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作为包被抗体用于 ELISA 检测(如肿瘤标志物 CA19-9、炎症因子 IL-6)。
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与其他克隆组合构建 “双抗夹心” 体系,提高检测灵敏度(如检测小分子药物残留)。
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治疗性抗体开发:
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若为中和性抗体,可用于 病毒中和实验 或 自身免疫病模型治疗(如阻断促炎细胞因子)。
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结合 ADC 技术(抗体 - 药物偶联物),实现肿瘤细胞的精准杀伤(需验证抗体与肿瘤细胞的结合特异性)。
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大规模培养:在摇瓶或生物反应器中优化参数(如溶氧 20–50%、搅拌速度 80–120 rpm),目标抗体滴度提升至 500 mg/L 以上。
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纯化工艺:采用 Protein A 层析 捕获抗体,结合 离子交换层析 去除杂质(如 HCP、DNA),*终纯度需≥95%(SDS-PAGE 验证)。
由于 C7B8H4 的具体信息未知,需通过实验明确其特性:
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结合实验:
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间接 ELISA:用免疫原包被微孔板,加入细胞培养上清,检测 OD450 值(临界值≥2.1 视为阳性)。
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Western blot:验证抗体与天然抗原的结合(如肿瘤细胞裂解液中的靶蛋白),排除非特异性条带。
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功能实验:
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若为抗细胞因子抗体,可通过 细胞增殖抑制实验 验证中和活性(如阻断 IL-2 依赖的 T 细胞增殖)。
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若为抗毒素抗体,可通过 动物保护实验 评估体内中和能力(如小鼠腹腔注射毒素 + 抗体,观察存活率)。
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核型分析:通过 染色体显带技术 观察细胞染色体数目(杂交瘤细胞通常为 100–120 条),排除核型异常导致的功能丢失。
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连续传代验证:传代至 30 代后,对比不同代次细胞的 抗体分泌量(ELISA)和 倍增时间,确认遗传稳定性。
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污染防控:
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每周用 台盼蓝染色 检测细胞活率(应>90%),若活率骤降需排查支原体(MycoAlert 试剂盒)或细菌污染。
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不同克隆分开培养,避免交叉污染(如使用独立的培养箱区域)。
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信息溯源:
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若细胞来自实验室内部,需索取 细胞鉴定报告(含抗体亚型、免疫原信息)及 冻存代数记录。
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若为商业购买,可联系供应商(如 ATCC、DSMZ)确认是否属于 C7B8 系列细胞株的衍生克隆。
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伦理与**:
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涉及人类样本或病原体(如 HIV、新冠病毒)的研究,需在 BSL-2 及以上实验室 操作,并遵守生物**法规。
C7B8H4 小鼠杂交瘤细胞的价值取决于其分泌抗体的特性,当前需通过 抗原鉴定 和 功能验证 明确其应用方向。若需进一步研究(如肿瘤免疫、感染性疾病),建议补充免疫原类型或预期用途,以便设计更针对性的实验方案。
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